全国登革热监测方案(试行)
附件4 C 6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
www.med8th.com | 2005年9月1日
附件4 C 6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
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中华人民共和国卫生部8月19日,全国登革热监测方案(试行)
附件4 C 6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
标本:
(1)患者血清:无菌采集发病后5日内登革患者静脉血3ml,分离血清,接种细胞培养;不能及时接种细胞者可置-70℃保存。污染的血清要加双抗(青霉素、链霉素,终浓度各1000U/ml),4℃2小时处理后接种细胞。
(2)尸检材料:脑、肝等。
(3)蚊:采集吸过血的伊蚊或其它可疑媒介蚊,用0.5mol/L(10%)葡萄糖液喂养,至胃血完全消化后置-70℃保存,死后按蚊种及捕获地点分组,5~10只/组,生理盐水冲洗数次后,用研磨器研碎,每组加0.5ml Hank’s液,2000转/分钟离心15分钟,取上清加双抗(青霉素、链霉素,终浓度各1000U/ml),4℃过夜,备用。
病毒分离:
将培养好的单层细胞上清弃掉,用Hank’s液洗涤2遍,接种用Hank’s液稀释成10-1的患者血清0.1ml或组织悬液或蚊悬液0.2ml。C6/36细胞在28℃吸附1小时, BHK21细胞在37℃吸附1小时,补加维持液,C6/36细胞在28℃培养,BHK21细胞在37℃培养。第二天开始观察细胞病变情况。一般BHK21细胞4天左右出现病变,C6/36细胞需要在28℃培养7天。如果没有细胞病变,则盲传3代(每次取细胞悬液0.1ml)接种细胞传代。按附件6进行鉴定。
相关内容
全国登革热监测方案(试行)
一、概述
二、监测目的
三、监测病例定义
四、监测内容和方法
五、监测系统组成和职责
六、数据收集、分析、反馈
七、监测系统的质量控制
八、附件
附表1 登革热(登革出血热)个案调查表
附表2 登革热病例调查一览表/登革热发病情况入户调查登记表
附表3 登革热媒介伊蚊监测孳生地调查登记表
附表4 登革热媒介伊蚊监测孳生地调查统计报表
附表5 登革热媒介伊蚊成蚊密度调查表
附表6 媒介伊蚊登革病毒分离送检登记表
附表7 疑似登革热病人检材送检一览表
附表8 病原学检测结果一览表
附表9 疑似登革热病例送检表(临床)
附件1 免疫荧光法(IFA)检测IgG抗体
附件2 酶联免疫吸附试验(ELISA)检测单份和/或双份血清IgG抗体
附件3 IgM捕捉ELISA法(MacELISA)检测登革热IgM抗体
附件4 C 6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
附件5 乳鼠分离登革热病毒
附件6 免疫荧光法检测DV抗原
附件7 RT-PCR检测DV基因及分型
一、概述
二、监测目的
三、监测病例定义
四、监测内容和方法
五、监测系统组成和职责
六、数据收集、分析、反馈
七、监测系统的质量控制
八、附件
附表1 登革热(登革出血热)个案调查表
附表2 登革热病例调查一览表/登革热发病情况入户调查登记表
附表3 登革热媒介伊蚊监测孳生地调查登记表
附表4 登革热媒介伊蚊监测孳生地调查统计报表
附表5 登革热媒介伊蚊成蚊密度调查表
附表6 媒介伊蚊登革病毒分离送检登记表
附表7 疑似登革热病人检材送检一览表
附表8 病原学检测结果一览表
附表9 疑似登革热病例送检表(临床)
附件1 免疫荧光法(IFA)检测IgG抗体
附件2 酶联免疫吸附试验(ELISA)检测单份和/或双份血清IgG抗体
附件3 IgM捕捉ELISA法(MacELISA)检测登革热IgM抗体
附件4 C 6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
附件5 乳鼠分离登革热病毒
附件6 免疫荧光法检测DV抗原
附件7 RT-PCR检测DV基因及分型
